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      類風濕性關節炎模型構建

      產品簡介

      類風濕性關節炎模型構建:類風濕性關節炎(RA)模型是研究其發病機制、藥物篩選及治療策略的核心工具。

      產品型號:
      更新時間:2025-05-13
      廠商性質:代理商
      訪問量:1214
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      一、模型分類與選擇策略

      1. 誘導性模型(主流方法,占文獻案例80%以上)
      模型類型核心機制與特點適用場景
      膠原誘導性關節炎(CIA)皮下注射Ⅱ型膠原(CII)+弗氏wan全佐劑(CFA),模擬Th1/Th17炎癥,關節破壞顯著,病理特征接近人類RA 免疫病理機制研究、生物制劑評估
      佐劑性關節炎(AIA)皮內注射CFA激活固有免疫,快速誘導急性炎癥(7-10天發病),但缺乏慢性病理過程 抗炎藥物初步篩選
      膠原抗體誘導性關節炎(CAIA)注射抗CII單克隆抗體(如M2139),快速(5-7天)誘發嚴重關節炎,適用于急性炎癥機制研究 急性炎癥反應與抗體依賴性病理分析
      卵蛋白誘導模型卵清蛋白(OVA)致敏+關節內抗原激發,兔模型成功率>90%,適合大關節病變觀察 手術干預與影像學動態監測
      2. 基因工程模型(精準機制研究)
      • 轉基因小鼠

        • TNF-α過表達:自發慢性關節炎,模擬RA滑膜增生與骨侵蝕


        • IL-4Rα人源化:保留90%人類免疫應答特征,用于靶向抗體(如度普利尤單抗)驗證

      • 基因編輯模型

        • STAT3條件性敲除:揭示Th17細胞分化調控機制

      3. 病證結合模型(中醫特色)
      • 寒濕痹阻證模型:CIA大鼠+低溫高濕環境暴露,出現關節冷痛、血瘀指標異常(全血黏度升高)

      • 濕熱痹阻證模型:CIA+高溫高濕環境,伴隨IL-17/TNF-α顯著升高,滑膜充血水腫

      4. 自發性模型(模擬遺傳易感性)
      • K/BxN小鼠:TCR轉基因+ MHC-II變異,自發對稱性關節炎,無需外源誘導

      • SKG小鼠:ZAP-70基因突變,Th17極化顯著,關節炎發病率>80%


      二、實驗動物選擇與品系優化

      1. 常用物種與品系
      動物優勢特性典型應用
      DBA/1小鼠對CIA高度敏感(發病率80-100%),關節侵蝕顯著 免疫機制研究與藥物長期療效評估
      SD大鼠成本低、操作便捷,適合高通量篩選(CIA發病率60-80%)中藥復方與毒性測試
      新西蘭兔關節體積大,便于手術干預與影像學跟蹤(如Micro-CT)局部治療(關節內注射)效果驗證
      非人靈長類免疫系統與人類高度同源,適合轉化醫學研究 生物制劑安全性及長效性評估
      2. 性別與年齡
      • 性別差異:雌性動物發病率普遍高于雄性(如CIA模型雌性發病率比雄性高30%),可能與雌激素調控Th17分化相關。

      • 年齡窗口:6-8周齡小鼠/大鼠(免疫系統成熟),老年動物(>12月齡)用于模擬RA合并骨質疏松


      三、模型構建標準化流程(以CIA模型為例)

      1. 材料準備
      • 抗原乳化:雞/牛Ⅱ型膠原(2mg/mL)與CFA按1:1體積乳化至油包水狀態(離心3000rpm×5min驗證穩定性)

      • 動物預適應:清潔級環境中適應7天,控制光照周期(12h/12h)與飲食(避免高脂飼料干擾免疫應答)。

      2. 免疫接種
      • 初次免疫:尾根部皮內注射乳化劑100μL(含CII 100μg)

      • 加強免疫:21天后同劑量腹腔注射,或改用不wan全弗氏佐劑(IFA)減少局部肉芽腫

      3. 疾病監測
      • 臨床評分(0-4分制):

        • 0分:無紅腫;1分:單個趾關節腫脹;2分:多趾關節腫脹;3分:踝關節受累;4分:全身性關節強直

      • 足跖厚度:游標卡尺測量,腫脹率=(實驗組厚度-對照組)/對照組×100%(>30%為陽性)


      四、模型驗證與評價體系

      1. 組織病理學分析
      檢測項目技術方法關鍵指標與判定標準
      滑膜增生H&E染色滑膜層數>5層,炎性細胞浸潤(每HPF>50個)
      血管翳形成CD31免疫組化新生血管密度≥3個/HPF,提示侵襲性破壞
      骨侵蝕Micro-CT三維重建骨體積分數(BV/TV)下降>20%,骨小梁分離度增加
      2. 血清學與分子檢測
      • 自身抗體:RF(>20IU/mL)、抗CCP抗體(>5U/mL)

      • 炎癥因子

        • Th1/Th17型:IFN-γ (>50pg/mL)、IL-17A (>30pg/mL)

        • Th2型:IL-4 (>40pg/mL)、IL-13 (>25pg/mL)

      • 氧化應激:MDA (>4nmol/mg蛋白)、SOD活性下降>30%

      3. 功能影像學
      • 超聲彈性成像:滑膜楊氏模量>50kPa提示纖維化(正常<30kPa)

      • 光聲成像(PAI) :實時監測滑膜血氧飽和度(SO?<85%提示缺氧微環境)


      五、創新方向與技術突破

      1. 人源化與基因編輯模型
      • PBMC移植模型:將RA患者外周血單核細胞移植至免疫缺陷小鼠(如NSG),保留供體特異性自身抗體譜

      • CRISPR動態調控:光控誘導TNF-α或IL-6表達,實現炎癥時空特異性激活

      2. 類器官與3D模型
      • 滑膜類器官芯片:人源iPSC分化的滑膜細胞與血管內皮共培養,模擬血管翳侵襲過程

      • 關節-on-a-chip:集成機械應力與流體剪切力,評估藥物對滑膜-軟骨界面的保護作用

      3. 多組學整合分析
      • 單細胞轉錄組:解析滑膜中巨噬細胞M1/M2極化時序及成纖維細胞亞群異質性

      • 代謝流分析:13C標記葡萄糖追蹤,揭示RA滑膜細胞的“瓦氏效應"重編程

      4. 動態監測技術
      • 植入式生物傳感器:實時檢測關節腔IL-6、TNF-α濃度(精度±5pg/mL)

      • AI行為分析:深度學習識別動物步態異常(靈敏度>95%),量化關節功能損傷


      六、挑戰與倫理考量

      1. 模型局限性

        • 嚙齒類模型缺乏人類RA的慢性進展特征(如骨侵蝕速度過快)

        • 中醫病證結合模型的主觀性較強,缺乏量化指標(如“寒濕"與“濕熱"的分子標志物)

      2. 標準化與可重復性

        • 抗原乳化工藝、佐劑批次差異導致模型穩定性波動(建議使用商品化標準化試劑)

        • 國際協作制定《RA模型操作指南》(參考ARRIVE 2.0框架)

      3. 動物福利

        • 疼痛管理:布洛芬緩釋片(10mg/kg bid)或局部冷敷減輕關節腫脹

        • 生存質量閾值:體重下降>15%、活動量減少>50%需提前終止實驗


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