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      裸鼠皮下成瘤模型構建

      產品簡介

      裸鼠皮下成瘤模型構建:裸鼠皮下成瘤模型是腫瘤研究中應用廣泛的動物模型之一,主要用于腫瘤生長機制研究、藥物療效評價、基因功能驗證等方向。該模型通過將人源或鼠源腫瘤細胞/組織移植至免疫缺陷裸鼠皮下,模擬腫瘤生長微環境。

      產品型號:
      更新時間:2025-05-09
      廠商性質:代理商
      訪問量:1728
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      一、模型構建流程與核心技術

      1. 實驗動物選擇
      • 品系選擇

      • 常用品系:BALB/c nu/nu裸鼠(T細胞缺陷)、NOD-SCID(T/B/NK細胞缺陷)、NSG(NOD-SCID-IL2Rγ-/-,全免疫缺陷)

      • 性別與周齡:優先選擇雄性裸鼠(6-8周齡,體重18-20 g),減少激素干擾

        • 飼養條件:SPF級環境,溫度22-25℃,濕度40-70%,12小時光照/黑暗周期

      2. 腫瘤細胞準備
      • 細胞株選擇

      • 高成瘤細胞:HCT-116(結直腸癌,成瘤率100%)、SKOV3(卵巢癌)、SGC-7901(胃癌)

      • 爭議性細胞:如Hep-G2(肝癌)需高細胞密度(1×10? cells/只)接種

        • 細胞預處理

      • 傳代要求:取對數生長期細胞(活力>95%),胰酶消化后離心(1000 rpm,5分鐘),重懸于PBS或基質膠(Matrigel)中(體積比1:1)

      • 濃度調整:常規接種濃度1×10?~1×10? cells/mL(具體依細胞株特性調整)

      3. 皮下接種操作
      • 注射部位

      • 腋下:右腋皮下(淋巴引流明確,便于觀察轉移)

      • 背部:中線兩側(避免動物抓撓)

        • 操作步驟

      1. 麻醉:1%戊ba比妥鈉(50 mg/kg)或異氟烷吸入麻醉

      2. 注射:使用1 mL注射器(22-25G針頭),緩慢注入0.1-0.2 mL細胞懸液(避免滲漏)

      3. 退針后輕壓注射點,防止細胞液反流

      4. 術后監測與數據記錄
      • 成瘤時間

      • 快速成瘤型:HCT-116(7天可見結節)

      • 慢速成瘤型:原代細胞或低侵襲性細胞需2-4周

        • 監測指標

      • 腫瘤體積:游標卡尺測量長徑(L)和短徑(W),按公式V=1/2×L×W2計算

      • 動物狀態:體重變化、活動度、腫瘤潰瘍情況


      二、模型評價體系與驗證方法

      1. 成瘤率與生長曲線
      • 成功標準:瘤體體積≥100 mm3(通常接種后2-4周)

      • 生長曲線分析:繪制腫瘤體積-時間曲線,計算倍增時間(如HCT-116約3天)

      2. 組織病理學驗證
      • HE染色:觀察腫瘤細胞異型性、核分裂象及間質浸潤

      • 免疫組化:檢測Ki-67(增殖指數)、CD31(微血管密度)等標志物

      3. 分子生物學檢測
      • 基因表達:qPCR或Western blot驗證目標基因(如PRDX4、ASAP1)在瘤體中的表達

      • 信號通路分析:檢測PI3K/AKT、VEGF等通路關鍵蛋白

      4. 功能成像技術
      • 小動物PET/CT:18F-FDG示蹤腫瘤代謝活性

      • 活體熒光成像:適用于標記熒光素酶(Luc)的腫瘤細胞


      三、技術優化與常見問題解決

      1. 提高成瘤率的策略
      • 細胞預處理

      • 基質膠混合:增強細胞黏附與血管生成(如SKOV3聯合Matrigel)

      • 低溫操作:細胞懸液全程冰上保存,減少凋亡

        • 動物選擇優化

      • 年輕裸鼠:4-6周齡代謝活躍,成瘤更快

      • 免疫強化品系:NSG小鼠適用于低成瘤性細胞

      2. 常見問題與解決方案
      問題類型可能原因解決方案
      無腫瘤形成細胞活力低/接種量不足提高細胞濃度至1×10? cells/mL,檢測臺盼藍染色
      腫瘤體積差異大注射不均勻或滲漏使用細針頭(25G),退針后按壓30秒
      動物死亡麻醉過量或感染控制戊ba比妥鈉劑量≤50 mg/kg,術后給予抗生素
      3. 特殊模型構建技巧
      • 原位移植模型

      • 皮下傳代后切取瘤塊(1 mm3)移植至靶器官(如胃壁),模擬轉移

        • 基因編輯模型

      • CRISPR/Cas9敲除目標基因(如KMT2D)后接種,研究基因功能


      四、應用場景與案例分析

      1. 抗腫瘤藥物篩選
      • 案例:卡培他濱抑制HCT-116裸鼠瘤體生長,腫瘤體積減少60%

      • 評價指標:瘤重抑制率=(對照組瘤重-實驗組瘤重)/對照組瘤重×100%

      2. 基因功能研究
      • 案例:sh-PRDX4組瘤體體積較對照組下降50%,證實PRDX4促癌作用

      • 驗證方法:shRNA慢病毒轉染+皮下成瘤

      3. 轉移機制探索
      • 案例:過表達miR-449a抑制Bel-7402肝癌細胞轉移,肺轉移灶減少80%

      • 技術延伸:結合淋巴結解剖與HE染色分析轉移率


      五、倫理規范與實驗設計

      1. 倫理原則
      • 3R原則

      • 替代(Replacement) :優先使用體外模型預實驗

      • 減少(Reduction) :每組≥5只裸鼠(統計學意義)

      • 優化(Refinement) :術中麻醉+術后鎮痛(布洛芬5 mg/kg)

      2. 實驗記錄標準化
      • 數據記錄:詳細記錄接種時間、細胞批次、動物編號

      • 病理存檔:瘤體福爾馬林固定或液氮凍存,供后續分析


      六、總結與未來方向

      裸鼠皮下成瘤模型因其操作簡便成本可控高重復性,成為腫瘤研究的核心工具。未來發展趨勢包括:

      1. 多組學整合:單細胞測序解析瘤內異質性

      2. 動態監測技術:納米探針聯合micro-CT實現微轉移灶無創檢測

      3. 人源化升級:PDX(人源腫瘤異種移植)模型替代傳統CDX模型,提高臨床預測性


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